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| 品牌 | 其他品牌 | 貨號 | BFN608008565 |
|---|---|---|---|
| 規格 | T25培養瓶x1 1.5ml凍存管x2 | 供貨周期 | 現貨 |
| 主要用途 | 僅供科研 | 應用領域 | 醫療衛生,生物產業 |
細胞名稱 | 人乳腺癌細胞 MDA-MB-468 |
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貨物編碼 | BFN608008565 | ||
產品規格 | T25培養瓶x1 | 1.5ml凍存管x2 | |
細胞數量 | 1x10^6 | 1x10^6 | |
保存溫度 | 37℃ | -198℃ | |
運輸方式 | 常溫保溫運輸 | 干冰運輸 | |
安全等級 | 1 | ||
用途限制 | 僅供科研 1類 | ||
培養體系 | DMEM高糖培養基+10%FBS+1%雙抗 | ||
培養溫度 | 37℃ | 二氧化碳濃度 | 5% |
簡介 | 人乳腺癌細胞 MDA-MB-468細胞是1977年由CailleauR等從一位患有轉移性乳腺癌的51歲黑人女性的胸腔積液中分離得到的。雖然供體組織的G6PD等位基因雜合，但此細胞株始終表現為G6PDA表型。P53基因273位密碼子存在G→A突變，從而導致Arg→His替代。每個細胞上存在1×106個EGF受體。 該細胞引種自ATCC HTB-132 | ||
注釋 | Group: Triple negative breast cancer (TNBC) cell line. Part of: Cancer Cell Line Encyclopedia (CCLE) project. Part of: COSMIC cell lines project. Part of: EGFR genetic alteration cell panel (ATCC TCP-1027). Part of: GrayJW Breast Cancer Cell Line Panel. Part of: ICBP43 breast cancer cell line panel. Part of: KuDOS 95 cell line panel. Part of: MD Anderson Cell Lines Project. Part of: NCI-60 cancer cell line panel. Doubling time: 62 hours (NCI-DTP); ~30-40 hours (DSMZ); ~47 hours (PBCF); 79.76 hours Microsatellite instability: Stable (MSS) (PubMed=15677628; Sanger). Omics: Array-based CGH. Omics: CNV analysis. Omics: Deep exome analysis. Omics: Deep proteome analysis. Omics: Deep quantitative proteome analysis. Omics: Deep RNAseq analysis. Omics: DNA methylation analysis. Omics: Fluorescence phenotype profiling. Omics: Glycoproteome analysis by proteomics. Omics: lncRNA expression profiling. Omics: Metabolome analysis. Omics: miRNA expression profiling. Omics: Protein expression by reverse-phase protein arrays. Omics: SNP array analysis. Omics: Transcriptome analysis. | ||
STR信息 |
Amelogenin X CSF1PO 12 D2S1338 17,25 D3S1358 15 D5S818 12 D7S820 8 D8S1179 13 D13S317 12 D16S539 9 D18S51 17 D19S433 12,13 D21S11 27 (CCRID) 27,28 (PubMed=25877200; PubMed=28889351) FGA 23 Penta D 8,10 Penta E 5 TH01 7 TPOX 8,9 vWA 18 | ||
參考文獻 | PubMed=28889351; DOI=10.1007/s10549-017-4496-x Saunus J.M., Smart C.E., Kutasovic J.R., Johnston R.L., Kalita-de Croft P., Miranda M., Rozali E.N., Vargas A.C., Reid L.E., Lorsy E., Cocciardi S., Seidens T., McCart Reed A.E., Dalley A.J., Wockner L.F., Johnson J., Sarkar D., Askarian-Amiri M.E., Simpson P.T., Khanna K.K., Chenevix-Trench G., Al-Ejeh F., Lakhani S.R. Multidimensional phenotyping of breast cancer cell lines to guide preclinical research. Breast Cancer Res. Treat. 167:289-301(2018)
PubMed=30613774; DOI=10.1126/sciadv.aau7314 Vande Voorde J., Ackermann T., Pfetzer N., Sumpton D., Mackay G., Kalna G., Nixon C., Blyth K., Gottlieb E., Tardito S. Improving the metabolic fidelity of cancer models with a physiological cell culture medium. Sci. Adv. 5:Eaau7314-Eaau7314(2019)
PubMed=30787054; DOI=10.1158/1055-9965.EPI-18-1132 Hooker S.E., Woods-Burnham L., Bathina M., Lloyd S.M., Gorjala P., Mitra R., Nonn L., Kimbro K.S., Kittles R. Genetic ancestry analysis reveals misclassification of commonly used cancer cell lines. Cancer Epidemiol. Biomarkers Prev. 28:1003-1009(2019)
PubMed=30894373; DOI=10.1158/0008-5472.CAN-18-2747 Dutil J., Chen Z., Monteiro A.N., Teer J.K., Eschrich S.A. An interactive resource to probe genetic diversity and estimated ancestry in cancer cell lines. Cancer Res. 79:1263-1273(2019)
PubMed=31068700; DOI=10.1038/s41586-019-1186-3 Ghandi M., Huang F.W., Jane-Valbuena J., Kryukov G.V., Lo C.C., McDonald E.R. III, Barretina J., Gelfand E.T., Bielski C.M., Li H., Hu K., Andreev-Drakhlin A.Y., Kim J., Hess J.M., Haas B.J., Aguet F., Weir B.A., Rothberg M.V., Paolella B.R., Lawrence M.S., Akbani R., Lu Y., Tiv H.L., Gokhale P.C., de Weck A., Mansour A.A., Oh C., Shih J., Hadi K., Rosen Y., Bistline J., Venkatesan K., Reddy A., Sonkin D., Liu M., Lehar J., Korn J.M., Porter D.A., Jones M.D., Golji J., Caponigro G., Taylor J.E., Dunning C.M., Creech A.L., Warren A.C., McFarland J.M., Zamanighomi M., Kauffmann A., Stransky N., Imielinski M., Maruvka Y.E., Cherniack A.D., Tsherniak A., Vazquez F., Jaffe J.D., Lane A.A., Weinstock D.M., Johannessen C.M., Morrissey M.P., Stegmeier F., Schlegel R., Hahn W.C., Getz G., Mills G.B., Boehm J.S., Golub T.R., Garraway L.A., Sellers W.R. Next-generation characterization of the Cancer Cell Line Encyclopedia. Nature 569:503-508(2019)
PubMed=31978347; DOI=10.1016/j.cell.2019.12.023 Nusinow D.P., Szpyt J., Ghandi M., Rose C.M., McDonald E.R. III, Kalocsay M., Jane-Valbuena J., Gelfand E., Schweppe D.K., Jedrychowski M., Golji J., Porter D.A., Rejtar T., Wang Y.K., Kryukov G.V., Stegmeier F., Erickson B.K., Garraway L.A., Sellers W.R., Gygi S.P. Quantitative proteomics of the Cancer Cell Line Encyclopedia. Cell 180:387-402(2020) | ||
驗收細胞注意事項
1、收到人乳腺癌細胞 MDA-MB-468細胞，請查看瓶子是否有破裂，培養基是否漏出，是否渾濁，如有請盡快聯系。
2、收到人乳腺癌細胞 MDA-MB-468細胞，如包裝完好，請在顯微鏡下觀察細胞。,由于運輸過程中的問題，細胞培養瓶中的貼壁細胞有可能從瓶壁中脫落下來，顯微鏡下觀察會出現細胞懸浮的情況，出現此狀態時，請不要打開細胞培養瓶，應立即將培養瓶置于細胞培養箱里靜止 3-5 小時左右，讓細胞先穩定下，再于顯微鏡下觀察，此時多數細胞會重新貼附于瓶壁。如細胞仍不能貼壁，請用臺盼藍染色法鑒定細胞活力，如臺盼藍染色證實細胞活力正常請按懸浮細胞的方法處理。
3、收到人乳腺癌細胞 MDA-MB-468細胞后，請鏡下觀察細胞，用恰當方式處理細胞。若懸浮的細胞較多，請離心收集細胞，接種到一個新的培養瓶中。棄掉原液，使用新鮮配制的培養基，使用進口胎牛血清。剛接到細胞，若細胞不多時 血清濃度可以加到 15％去培養。若細胞迏到 80%左右 ，血清濃度還是在 10％。
4、收到人乳腺癌細胞 MDA-MB-468細胞時如無異常情況 ，請在顯微鏡下觀察細胞密度，如為貼壁細胞，未超過80%匯合度時，將培養瓶中培養基吸出，留下 5-10ML 培養基繼續培養：超過 80%匯合度時，請按細胞培養條件傳代培養。如為懸浮細胞，吸出培養液，1000 轉/分鐘離心 3 分鐘，吸出上清，管底細胞用新鮮培養基懸浮細胞后移回培養瓶。
5、將培養瓶置于 37℃培養箱中培養，蓋子微微擰松。吸出的培養基可以保存在滅菌過的瓶子里，存放于 4℃冰箱，以備不時之需。
6、24 小時后，人乳腺癌細胞MDA-MB-231細胞形態已恢復并貼滿瓶壁，即可傳代。（貼壁細胞）將培養瓶里的培養基倒去，加 3-5ml（以能覆蓋細胞生長面為準）PBS 或 Hanks’液洗滌后棄去。加 0.5-1ml 0.25%含 EDTA 的胰酶消化，消化時間以具體細胞為準，一般 1-3 分鐘，不超過 5 分鐘?？梢苑?/span>入37℃培養箱消化。輕輕晃動瓶壁，見細胞脫落下來，加入 3-5ml 培養基終止消化。用移液管輕輕吹打瓶壁上的細胞，使之*脫落，然后將溶液吸入離心管內離心，1000rpm/5min。棄上清，視細胞數量決定分瓶數，一般一傳二，如細胞量多可一傳三，有些細胞不易傳得過稀，有些生長較快的細胞則可以多傳幾瓶，以具體細胞和經驗為準。（懸浮細胞）用移液管輕輕吹打瓶壁，直接將溶液吸入離心管離心即可。
7、貼壁細胞 ，懸浮細胞。嚴格無菌操作。換液時，換新的細胞培養瓶和換新鮮的培養液，37℃，5%CO2 培養。
特別提醒： 原瓶中培養基不宜繼續使用，請更換新鮮培養基培養。
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